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      DRIPc-seq

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      DRIPc-seq可以應用于任何細胞類型,只要可以收集足夠的起始材料,都可以準確繪制R-loop在各種細胞系和不同條件下的分布。在全基因組范圍內提供可重復的、高分辨率的、鏈特異性的R-loop圖譜。
      技術詳情

      技術簡介

      細胞中存在一類被稱作R-loop的特殊三鏈核酸結構,由DNA-RNA雜交體和相關的非模板單鏈DNA組成。哺乳動物細胞中約有5%的區域會形成R-loop,多數集中在轉錄起始區和轉錄終止區,由RNA Pol I,II與III轉錄的RNA均可與DNA形成R-loop,表明其可來源于幾乎所有類型的RNA。R-loop可以在細菌到人類等生物體細胞內頻繁的形成,進而影響轉錄并導致基因組的不穩定性,異常R-loop的形成和積累與許多疾病的發生發展具有密切關系,解析R-loop的分布和調控基因表達的機制十分重要。

      DRIPc-seq可以應用于任何細胞類型,只要可以收集足夠的起始材料,都可以準確繪制R-loop在各種細胞系和不同條件下的分布。在全基因組范圍內提供可重復的、高分辨率的、鏈特異性的R-loop圖譜。

      實驗原理

      DRIPc-seq是一種高分辨率和鏈特異性的方法,可以精確地繪制全基因組的R環。簡單地說,經過溫和的DNA提取和限制性內切酶酶切片段化后,用S9.6抗體對R環結構進行免疫沉淀實驗(該抗體對RNA-DNA雜交物顯示出亞納摩爾親和力,對雙鏈DNA幾乎沒有親和力)。雜交體的RNA鏈通過DNase I處理釋放,并用dUTP進行逆轉錄合成第二條鏈。隨后用尿嘧啶- N -糖基酶(UNG)處理,確保了文庫僅由一條鏈構建。然后在滿足質量控制后對cDNA進行擴增和測序。

      圖片1副本

      DRIPc-seq流程圖

      產品優勢

      靈敏度高:能夠得到全基因組范圍內的R-loop圖譜

      特異性好:背景噪音低,所需測序深度少

      鏈特異性:采用鏈特異性建庫,保留鏈的信息

      實驗重復性好:實驗重復結果一致性好


      樣品要求

      樣品類型

      組織、細胞、總DNA或IP后DNA。其它類型樣品請詳詢。

      樣品量

      a) 細胞:2×107

      b) 組織:100 mg

      c) 總DNA:> 30 μg


      樣品運輸及保存

      樣品運輸:樣品置于1.5mL離心管中,封口膜封好,干冰運輸。

      樣品保存:細胞樣品或新鮮組織塊,液氮凍存后-80℃保存;DNA樣品-80℃保存,避免反復凍融。


      案例分析

      原文:High-resolution, strand-specific R-loop mapping via S9.6-based DNA–RNA immunoprecipitation and high-throughput sequencing

      期刊:NATURE PROTOCOLS        發表時間:2019.5.3      影響因子:14.8

      通過DRIP-seq和DRIPc-seq進行R環定位,能夠測量任何感興趣的基因組中r環結構的穩態分布。更重要的是,這些方法可用于由遺傳擾動(基因敲除或敲低)或化學處理(藥物,激素)引起的R環分布或動力學的全局變化。已發表的例子包括人乳腺癌細胞對雌激素轉錄誘導的反應或沉默人HEK293細胞中DNA拓撲異構酶1的后果。利用DRIPc-seq在小鼠細胞和酵母中成功地檢測到了R-loop譜。


      DRIPc-seq
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      DRIPc-seq可以應用于任何細胞類型,只要可以收集足夠的起始材料,都可以準確繪制R-loop在各種細胞系和不同條件下的分布。在全基因組范圍內提供可重復的、高分辨率的、鏈特異性的R-loop圖譜。
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      細胞中存在一類被稱作R-loop的特殊三鏈核酸結構,由DNA-RNA雜交體和相關的非模板單鏈DNA組成。哺乳動物細胞中約有5%的區域會形成R-loop,多數集中在轉錄起始區和轉錄終止區,由RNA Pol I,II與III轉錄的RNA均可與DNA形成R-loop,表明其可來源于幾乎所有類型的RNA。R-loop可以在細菌到人類等生物體細胞內頻繁的形成,進而影響轉錄并導致基因組的不穩定性,異常R-loop的形成和積累與許多疾病的發生發展具有密切關系,解析R-loop的分布和調控基因表達的機制十分重要。

      DRIPc-seq可以應用于任何細胞類型,只要可以收集足夠的起始材料,都可以準確繪制R-loop在各種細胞系和不同條件下的分布。在全基因組范圍內提供可重復的、高分辨率的、鏈特異性的R-loop圖譜。

      實驗原理

      DRIPc-seq是一種高分辨率和鏈特異性的方法,可以精確地繪制全基因組的R環。簡單地說,經過溫和的DNA提取和限制性內切酶酶切片段化后,用S9.6抗體對R環結構進行免疫沉淀實驗(該抗體對RNA-DNA雜交物顯示出亞納摩爾親和力,對雙鏈DNA幾乎沒有親和力)。雜交體的RNA鏈通過DNase I處理釋放,并用dUTP進行逆轉錄合成第二條鏈。隨后用尿嘧啶- N -糖基酶(UNG)處理,確保了文庫僅由一條鏈構建。然后在滿足質量控制后對cDNA進行擴增和測序。

      圖片1副本

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      產品優勢

      靈敏度高:能夠得到全基因組范圍內的R-loop圖譜

      特異性好:背景噪音低,所需測序深度少

      鏈特異性:采用鏈特異性建庫,保留鏈的信息

      實驗重復性好:實驗重復結果一致性好


      樣品要求

      樣品類型

      組織、細胞、總DNA或IP后DNA。其它類型樣品請詳詢。

      樣品量

      a) 細胞:2×107

      b) 組織:100 mg

      c) 總DNA:> 30 μg


      樣品運輸及保存

      樣品運輸:樣品置于1.5mL離心管中,封口膜封好,干冰運輸。

      樣品保存:細胞樣品或新鮮組織塊,液氮凍存后-80℃保存;DNA樣品-80℃保存,避免反復凍融。


      案例分析

      原文:High-resolution, strand-specific R-loop mapping via S9.6-based DNA–RNA immunoprecipitation and high-throughput sequencing

      期刊:NATURE PROTOCOLS        發表時間:2019.5.3      影響因子:14.8

      通過DRIP-seq和DRIPc-seq進行R環定位,能夠測量任何感興趣的基因組中r環結構的穩態分布。更重要的是,這些方法可用于由遺傳擾動(基因敲除或敲低)或化學處理(藥物,激素)引起的R環分布或動力學的全局變化。已發表的例子包括人乳腺癌細胞對雌激素轉錄誘導的反應或沉默人HEK293細胞中DNA拓撲異構酶1的后果。利用DRIPc-seq在小鼠細胞和酵母中成功地檢測到了R-loop譜。


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