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SLAM-seq(thiol(SH)-linked Alkylation for the Metabolic sequencing of RNA)可以理解為“S4U烷基化RNA代謝測序技術”,通過核苷類似物(S4U) 標記和高通量測序方法,實現對新生RNA與原有RNA的定量和識別。SLAM-seq技術有助于檢測RNA的半衰期與穩定性變化,鑒定RNA修飾所介導的靶基因變化,以及揭示mRNA穩定性的決定性因素。SLAM-seq是研究基因動態表達的首選,云序生物提供SLAM-seq測序服務,助力客戶深入研究基于轉錄調控的相關機制。
SLAM-seq技術原理
SLAM-seq技術是在培養的細胞中加入4-thiouridine (S4U)核酸類似物,轉錄時S4U可以與DNA序列上的A堿基互補配對,從而進入新合成的RNA鏈中。抽提總RNA,加入碘乙酰胺(IAA)使其發生化學修飾。在逆轉錄過程中發生修飾的S4U與G堿基發生錯配生成cDNA單鏈,導致最終檢測結果里原本的T變成了C。通過分析檢測 T→C 的轉變比例,即可得到新生RNA的信息。
實驗流程簡述如下:
1)S4U標記:培養的細胞中加入S4U,得到帶有S4U標記的新生RNA;
2)加化學修飾:抽提純化RNA,并加入碘乙酰胺(IAA)誘導S4U發生化學修飾;
3)構建文庫:逆轉錄時S4U與G發生錯配,后續PCR中G又與C配對;
4)上機測序:最終測序結果中本來該為T的位點被識別為C;
5)生物信息學分析:檢測 T→C 的轉變比例,即可得到新生RNA。
SLAM-seq測序流程圖
云序技術優勢
優勢1:操作簡單
對于常規的新生RNA檢測技術,一般需要復雜的標準化方案或者加入spike-in,而SLAM-seq無需繁瑣且技術要求苛刻的免疫共沉淀或生物素分離等操作,操作簡單。
優勢2:RNA用量少
后續分析中只需要檢測 T→C 轉變比例,即可知道新合成的RNA情況,大大減少了RNA的用量。
優勢3:靈敏度高
SLAM-seq可以通過區分已有的RNAs以及新合成的RNAs來扣除背景信號,對新合成的RNAs進行差異分析,提高基因差異表達檢測的靈敏度。
優勢4:應用方向廣
SLAM-seq技術除了可對新合成的轉錄本進行定量,還有助于檢測RNA的半衰期與穩定性變化,評估增強子的活性,鑒定RNA修飾所介導的靶基因變化,以及揭示mRNA穩定性的決定性因素等。
優勢5:一站式服務
客戶只需提供細胞,云序生物為您完成從樣品準備,文庫制備,上機測序到數據分析的整套服務流程。
優勢6:專業的生物信息學分析
云序生物擁有強大的生物信息學團隊,能夠滿足客戶的各類深入數據分析需求。
樣本要求
1.樣品類型:細胞
2.樣品量:
細胞:2×106
3.樣品處理:
在細胞培養時,將S4U(100μM)核酸類似物摻入培養基內,培養24 h(文獻推薦,具體可調整),倒掉培養基。用PBS清洗2次后,加入TRIzol或RNA保護劑處理,轉移至1.5ml離心管,封口膜封好,液氮凍存后-80℃保存(注意已保存的樣品不要反復凍融)。
4.樣品運輸:
如需運輸請使用干冰包裹。
案例解析
案例1:SLAm-seq可對轉錄本穩定性進行檢測
題目:Thiol-linked alkylation of RNA to assess expression dynamics
期刊:Nature Methods
高通量測序的基因表達譜揭示了穩定狀態下RNA種類的定性和定量變化,但模糊了RNA轉錄、加工和衰變的細胞內動力學。本研究中作者開發了用于RNA代謝測序的SLAM-seq,SLAM-seq能夠快速獲取總RNA背景下RNA聚合酶II依賴的基因表達動態。在小鼠胚胎干細胞中驗證了該方法,為了直接測量mRNA轉錄的穩定性,將mESCs進行S4U代謝RNA標記24小時,并在各個時間點制備總RNA。然后對總RNA進行烷基化和定量測序。最終通過mRNA的半衰期測量結果顯示,在mESCs中,mRNA的穩定性與mRNA的半衰期測量結果總體上具有良好的相關性。
圖1:mESCs中多聚腺苷酸轉錄本的豐度水平
圖2:mESCs中全局和轉錄特異性mRNA的穩定性
案例2:通過SLAM-seq定義了BRD4-MYC軸的直接基因調控功能
題目:SLAM-seq defines direct gene-regulatory functions of the BRD4-MYC axis
期刊:Science
作者通過將SLAM-seq與藥理學和化學遺傳擾動相結合,以確定癌癥中BRD4和MYC兩個轉錄因子的調節功能。發現BRD4作為RNA聚合酶II依賴性轉錄的共激活因子,在高劑量BETis藥物治療時被廣泛抑制。在觸發白血病選擇性效應的劑量下,BETis解除了包括MYC在內的一小部分超敏感靶點的調控。與BRD4相反,MYC主要作為選擇性轉錄激活因子控制代謝過程,如核糖體生物發生和新生嘌呤合成。該研究建立了一個簡單和可擴展的策略,以確定任何基因或途徑的直接轉錄目標。
圖1:BRD4的全局轉錄調控 BRD4的全局轉錄調控
圖2:劑量依賴性和對BETis反應的決定因素
SLAM-seq(thiol(SH)-linked Alkylation for the Metabolic sequencing of RNA)可以理解為“S4U烷基化RNA代謝測序技術”,通過核苷類似物(S4U) 標記和高通量測序方法,實現對新生RNA與原有RNA的定量和識別。SLAM-seq技術有助于檢測RNA的半衰期與穩定性變化,鑒定RNA修飾所介導的靶基因變化,以及揭示mRNA穩定性的決定性因素。SLAM-seq是研究基因動態表達的首選,云序生物提供SLAM-seq測序服務,助力客戶深入研究基于轉錄調控的相關機制。
SLAM-seq技術原理
SLAM-seq技術是在培養的細胞中加入4-thiouridine (S4U)核酸類似物,轉錄時S4U可以與DNA序列上的A堿基互補配對,從而進入新合成的RNA鏈中。抽提總RNA,加入碘乙酰胺(IAA)使其發生化學修飾。在逆轉錄過程中發生修飾的S4U與G堿基發生錯配生成cDNA單鏈,導致最終檢測結果里原本的T變成了C。通過分析檢測 T→C 的轉變比例,即可得到新生RNA的信息。
實驗流程簡述如下:
1)S4U標記:培養的細胞中加入S4U,得到帶有S4U標記的新生RNA;
2)加化學修飾:抽提純化RNA,并加入碘乙酰胺(IAA)誘導S4U發生化學修飾;
3)構建文庫:逆轉錄時S4U與G發生錯配,后續PCR中G又與C配對;
4)上機測序:最終測序結果中本來該為T的位點被識別為C;
5)生物信息學分析:檢測 T→C 的轉變比例,即可得到新生RNA。
SLAM-seq測序流程圖
云序技術優勢
優勢1:操作簡單
對于常規的新生RNA檢測技術,一般需要復雜的標準化方案或者加入spike-in,而SLAM-seq無需繁瑣且技術要求苛刻的免疫共沉淀或生物素分離等操作,操作簡單。
優勢2:RNA用量少
后續分析中只需要檢測 T→C 轉變比例,即可知道新合成的RNA情況,大大減少了RNA的用量。
優勢3:靈敏度高
SLAM-seq可以通過區分已有的RNAs以及新合成的RNAs來扣除背景信號,對新合成的RNAs進行差異分析,提高基因差異表達檢測的靈敏度。
優勢4:應用方向廣
SLAM-seq技術除了可對新合成的轉錄本進行定量,還有助于檢測RNA的半衰期與穩定性變化,評估增強子的活性,鑒定RNA修飾所介導的靶基因變化,以及揭示mRNA穩定性的決定性因素等。
優勢5:一站式服務
客戶只需提供細胞,云序生物為您完成從樣品準備,文庫制備,上機測序到數據分析的整套服務流程。
優勢6:專業的生物信息學分析
云序生物擁有強大的生物信息學團隊,能夠滿足客戶的各類深入數據分析需求。
樣本要求
1.樣品類型:細胞
2.樣品量:
細胞:2×106
3.樣品處理:
在細胞培養時,將S4U(100μM)核酸類似物摻入培養基內,培養24 h(文獻推薦,具體可調整),倒掉培養基。用PBS清洗2次后,加入TRIzol或RNA保護劑處理,轉移至1.5ml離心管,封口膜封好,液氮凍存后-80℃保存(注意已保存的樣品不要反復凍融)。
4.樣品運輸:
如需運輸請使用干冰包裹。
案例解析
案例1:SLAm-seq可對轉錄本穩定性進行檢測
題目:Thiol-linked alkylation of RNA to assess expression dynamics
期刊:Nature Methods
高通量測序的基因表達譜揭示了穩定狀態下RNA種類的定性和定量變化,但模糊了RNA轉錄、加工和衰變的細胞內動力學。本研究中作者開發了用于RNA代謝測序的SLAM-seq,SLAM-seq能夠快速獲取總RNA背景下RNA聚合酶II依賴的基因表達動態。在小鼠胚胎干細胞中驗證了該方法,為了直接測量mRNA轉錄的穩定性,將mESCs進行S4U代謝RNA標記24小時,并在各個時間點制備總RNA。然后對總RNA進行烷基化和定量測序。最終通過mRNA的半衰期測量結果顯示,在mESCs中,mRNA的穩定性與mRNA的半衰期測量結果總體上具有良好的相關性。
圖1:mESCs中多聚腺苷酸轉錄本的豐度水平
圖2:mESCs中全局和轉錄特異性mRNA的穩定性
案例2:通過SLAM-seq定義了BRD4-MYC軸的直接基因調控功能
題目:SLAM-seq defines direct gene-regulatory functions of the BRD4-MYC axis
期刊:Science
作者通過將SLAM-seq與藥理學和化學遺傳擾動相結合,以確定癌癥中BRD4和MYC兩個轉錄因子的調節功能。發現BRD4作為RNA聚合酶II依賴性轉錄的共激活因子,在高劑量BETis藥物治療時被廣泛抑制。在觸發白血病選擇性效應的劑量下,BETis解除了包括MYC在內的一小部分超敏感靶點的調控。與BRD4相反,MYC主要作為選擇性轉錄激活因子控制代謝過程,如核糖體生物發生和新生嘌呤合成。該研究建立了一個簡單和可擴展的策略,以確定任何基因或途徑的直接轉錄目標。
圖1:BRD4的全局轉錄調控 BRD4的全局轉錄調控
圖2:劑量依賴性和對BETis反應的決定因素
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